Yeast enhancement by mass mating and selective pressure for the integrated production process of first and second-generation ethanol

Autores

DOI:

https://doi.org/10.5327/Z2176-94782141

Palavras-chave:

biocombustíveis; hibridização; inibidores; hidrolisado lignocelulósico; tolerância

Resumo

A produção de etanol de segunda geração é uma tecnologia de aplicação mundial com potencial para substituir os combustíveis fósseis e contribuir para a sustentabilidade. A incorporação da produção de etanol de segunda geração nas biorrefinarias brasileiras, além das vantagens tecnológicas, acrescenta-se a abundância de matéria-prima proveniente da própria indústria sucroalcooleira. Porém, o desenvolvimento de cepas de leveduras que resistam às condições inibitórias do novo substrato, potencializadas pela reciclagem celular, é extremamente necessário. O objetivo do presente estudo foi o desenvolvimento de linhagens de leveduras por técnicas de hibridização e pressão seletiva, com perfil multitolerante para o processo de fermentação em batelada alimentada, utilizando uma mistura de melaço e hidrolisado de bagaço como substrato. Portanto, foi realizada a técnica de cruzamento massal envolvendo cinco cepas de Saccharomyces cerevisiae, previamente selecionadas, por demonstrarem alta tolerância à fermentação a partir de mosto misto composto por hidrolisado lignocelulósico e melaço de cana-de-açúcar. O cultivo resultante do cruzamento massal foi acompanhado de pressão seletiva durante 51 gerações, gerando enriquecimento de linhagens mais tolerantes. Por meio da avaliação do crescimento em microplacas (densidade óptica [DO] 600 nm), foram selecionados dez isolados evoluídos, os quais foram submetidos à fermentação em escala laboratorial, simulando ao máximo as condições industriais. Ao final, foi possível destacar uma linhagem (C8E1-13T) apresentando teor de reserva de trealose significativamente maior que as demais linhagens avaliadas, demonstrando assim, a geração de um fenótipo melhorado.

Downloads

Não há dados estatísticos.

Referências

Andrade, R.R; Maugeri Filho, F.; Maciel Filho, R.; da Costa, A.C., 2013. Kinetics of ethanol production from sugarcane bagasse enzymatic hydrolysate concentrated with molasses under cell recycle. Bioresource Technology, v. 130, 351-359. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2012.12.045.

Basso, L.C.; Amorim, H.V.; Oliveira, A.J.; Lopes, M.L., 2008. Yeast selection for fuel ethanol production in Brazil. FEMS Yeast Research, v. 8 (7), 1155-1163. https://doi.org/10.1111/j.1567-1364.2008.00428.x.

Bhavana, B.K.; Mudliar, S.N.; Bokade, V.V.; Debnath1, S., 2022. Effect of furfural, acetic acid and 5 hydroxymethylfurfural on yeast growth and xylitol fermentation using Pichia stipitis NCIM 3497. Biomass Conversion and Biorefinery, v. 14, 4909-4923. https://doi.org/10.1007/s13399-022-02758-w.

Blondin, B.; Vézinhet, F., 1988. Identification de souches de levure oenologiques par leur caryotypes obtenus em electrophorese em champ pulse. Revue Française d’Oenologie, v. 28, 7-11.

Carlos, L.; Olitta, T.; Nitsche, S., 2011. Ethanol production in Brazil: the industrial process and its impact on yeast fermentation. In: Bernardes, M.A.S. (Ed.), Biofuel Production-Recent Developments and Prospects. Intech, London, pp. 85-100. https://doi.org/10.5772/17047.

Catallo, M.; Iattici, F.; Randazzo, C.L.; Caggia, C.; Krogerus, K.; Magalhães, F.; Gibson, B.; Solieri. L., 2021. Hybridization of Saccharomyces cerevisiae sourdough strains with cryotolerant Saccharomyces bayanus NBRC1948 as a strategy to increase diversity of strains available for lager beer fermentation. Microorganisms, v. 9 (3), 1-21. https://doi.org/10.3390/microorganisms9030514.

Dionísio, S.R.; Santoro, D.C.J.; Bonan, C.I.D.G.; Soares, L.B.; Biazi, L.E.; Rabelo, L.E.; Ienczak, J.L., 2021. Second-generation ethanol process for integral use of hemicellulosic and cellulosic hydrolysates from diluted sulfuric acid pretreatment of sugarcane bagasse. Fuel, v. 304, 1-9. https://doi.org/10.1016/j.fuel.2021.121290.

Elbakush, A.E.; Güven, D., 2021. Evaluation of ethanol tolerance in relation to intracellular storage compounds of Saccharomyces cerevisiae using FT-IR spectroscopy. Process Biochemistry, v. 101, 266-273. https://doi.org/10.1016/j.procbio.2020.11.028.

Hemansi; Sharma, H.; Patel, A.K.; Saini, J.K.; Singhania, R.R., 2022. Development of multiple inhibitor tolerant yeast via adaptive laboratory evolution for sustainable bioethanol production, Bioresource Technology, v. 344 (4), 126247. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2021.126247.

Hou, L., 2010. Improved production of ethanol by novel genome shuffling in Saccharomyces cerevisiae. Applied Biochemistry and Biotechnology, v. 160 (4), 1084-1093. https://doi.org/10.1007/s12010-009-8552-9.

Khan, M.A.H.; Bonifacio, S.; Clowes, J.; Foulds, F.; Holland, R.; Matthews, J.C.; Percival, C.J.; Shallcross, D.E., 2021. Investigation of biofuel as a potential renewable energy source. Atmosphere. MDPI, v. 12, 1-24. https://doi.org/10.339/atmos12101289.

Ko, J.K.; Enkh-Amgalan, T.; Gong, G.; Um, Y.; Lee. S.M., 2020. Improved bioconversion of lignocellulosic biomass by Saccharomyces cerevisiae engineered for tolerance to acetic acid. GCB Bioenergy, v. 12 (1), 90-100. https://doi.org/10.1111/gcbb.12656.

Lairón-Peris, M.; Pérez-Través, L.; Muñiz-Calvo, S.; Guillamón, J.M.; Heras, J.M., Barrio, E.; Querol, A., 2020. Differential contribution of the parental genomes to a S. cerevisiae × S. uvarum hybrid, inferred by phenomic, genomic, and transcriptomic analyses, at different industrial stress conditions. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology, v. 8, 1-20. https://doi.org/10.3389/fbioe.2020.00129.

Li, J.; Zhao, R.; Xu, Y.; Wu, X.; Bean, S.R.; Wang, D., 2022. Fuel ethanol production from starchy grain and other crops: an overview on feedstocks, affecting factors, and technical advances. Renewable Energy, v. 188, 223-239. https://doi.org/10.1016/j.renene.2022.02.038.

Lindegren, C.C.; Lindegren, G., 1943. A new method for hybridizing yeast. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, v. 29 (10), 306-308. https://doi.org/10.1073/pnas.29.10.306.

Mans, R.; Daran, J.M.G.; Pronk, J.T., 2018. Under pressure: evolutionary engineering of yeast strains for improved performance in fuels and chemicals production. Current Opinion in Biotechnology, v. 50, 47-56. https://doi.org/10.1016/j.copbio.2017.10.011.

Lopes, M.L., 2000. Estudo do polimorfismo cromossômico em levedura selecionada do processo industrial de produção de etanol. Doctoral Thesis, Instituto de Biociências, Universidade Estadual Paulista, Rio Claro, São Paulo. Retrieved 2023-12-08, from www.unesp.br

Lopes, M.L.; de Lima Paulillo, S.C.; Cherubin, R.A.; Godoy, A.; Amorim Neto, H.B.; Amorim, H.V., 2015. Tailored yeast strains for ethanol production: the process driven selection. Fermentec, Piracicaba, 42 p.

Moonsamy, T.A.; Mandegari, M.; Farzad, S.; Görgens, J.F., 2022. A new insight into integrated first and second-generation bioethanol production from sugarcane. Industrial Crops and Products, v. 188, 1-13. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2022.115675.

Muynarsk, E.S.M.; Christofoleti-Furlan, R.M.; Dias do Prado, C.; Sthepani, B.O.C.; Vidal, D.C.O.; Basso, T.O.; Cunha, A.F.; Basso, L.C., 2023. Selection and improvement of Saccharomyces cerevisiae by direct and mass mating for integrated first and second generation (1G + 2G) ethanol production. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, v. 53, 102865. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2023.102865.

Oliveira, A.J.; Gallo, C.R.; Alcarde, V.E.; Godoy, A.; Amorim, H.V., 1996. Métodos para o controle microbiológico na produção de álcool e açúcar. FERMENTEC/FEALQ/ESALQ-USP, Piracicaba, 89 p.

Naseeb, S.; Visinoni, F.; Hu, Y.; Roberts, A.J.H.; Maslowska, A.; Walsh, T.; Smart, K.A.; Louis, E.J.; Delneri. D., 2021. Restoring fertility in yeast hybrids: breeding and quantitative genetics of beneficial traits. Proceedings of the National Academy of Sciences, v. 118 (38), 1-12. https://doi.org/10.1073/pnas.2101242118/-/DCSupplemental.

Neitzel, T.; Lima, C.L.; Biazi, L.E.; Collograi, K.C.; Costa, A.C.; Santos, L.V.; Ienczak, J.L., 2020. Impact of the melle-boinot process on the enhancement of second-generation ethanol production by Spathaspora passalidarum. Renewable Energy, v. 160 ,1206-1216. https://doi.org/10.1016/j.renene.2020.07.027.

Péter, M.; Gudmann, P.; Kóta, Z.; Török, Z.; Vígh, L.; Glatz, A.; Balogh, G., 2021. Lipids and trehalose actively cooperate in heat stress management of Schizosaccharomyces pombe. International Journal of Molecular Sciences, v. 22, 13272. https://doi.org/10.3390/ijms222413272.

Pinel, D.; D’Aoust, F.; del Cardayre, S.B.; Bajwa, P.K.; Lee, H.; Martin, V.J.J., 2011. Saccharomyces cerevisiae genome shuffling through recursive population mating leads to improved tolerance to spent sulfite liquor. Applied and Environmental Microbiology, v. 77 (14), 4736-4743. https://doi.org/10.1128/AEM.02769-10.

Phillips, E., 2022. Nanotechnological interventions in biofuel production. In: Sahay, S. (Ed.), Handbook of Biofuels Academic Press. Biofuels Academic Press, Cambridge, MA, pp. 593-604.

Qi, L.; Zhu, Y.; Wang, Y.; Tang, X.; Li, K.; He, M.; Sui, Y.; Wang, P.; Zheng, D.; Zhang, K., 2023. Nonlethal furfural exposure causes genomic alterations and adaptability evolution in Saccharomyces cerevisiae. Microbiology Spectrum, v. 11 (4), https://doi.org/10.1128/ spectrum.01216-23.

Santos, R.M.; Nogueira, F.C.S.; Brasil, A.A.; Carvalho, P.C.; Leprevost, F.V.; Domont, G.B.; Eleutherio, E.C.A., 2017. Quantitative proteomic analysis of the Saccharomyces cerevisiae industrial strains CAT-1 and PE-2. Journal of Proteomics, v. 151, 114-121. https://doi.org/10.1016/j.jprot.2016.08.020.

Steensels, J.; Snoek, T.; Meersman, E.; Nicolino, M.P.; Voordeckers, K.; Verstrepen, K.J., 2014. Improving industrial yeast strains: exploiting natural and artificial diversity. FEMS Microbiology Reviews, v. 38 (5), 947-995. https://doi.org/10.1111/1574-6976.12073.

Tahara, E.B.; Cunha, F.M.; Basso, T.O.; Della Bianca, B.E.; Gombert, A.K.; Kowaltowski, A.J., 2013. Calorie restriction hysteretically primes aging saccharomyces cerevisiae toward more effective oxidative metabolism. PLOS One, v. 8 (2), 1-11. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0056388.

Tomova, A.; Kujumdzieva, A.V.; Petrova, V.Y., 2019. Carbon source influences Saccharomyces cerevisiae yeast cell survival strategies: quiescence or sporulation. Biotechnology and Biotechnological Equipment, v. 33 (1), 1464-1470. https://doi.org/10.1080/13102818.2019.1674188.

Treco, D.A.; Winston, F., 2008. Growth and manipulation of yeast. Current Protocols in Molecular Biology, Chapter 13, Unit13.2. https://doi.org/10.1002/0471142727.mb1302s82.

Trevelyan, W.E.; Harrison, J.S., 1956. Studies on yeast metabolism. 5. The trehalose content of baker’s yeast during anaerobic fermentation. Biochemical Journal, v. 62, 177-183. https://doi.org/10.1042/bj0620177b.

Yao1, L.; Jia1, J.; Zhang1, O.; Zheng1, X.; Yang, H.; Dai1, J.; Chen1, X., 2024. Adaptive laboratory evolution to obtain furfural tolerant Saccharomyces cerevisiae for bioethanol production and the underlying mechanism. Frontiers in Microbiology, v. 14, 1-11. https://10,3389/fmicb.2023.1333777.

Zago, E.A.; Amorim, H.V.; Basso, L.C., 1989. Métodos Analíticos para o Controle da Produção de Álcool. Fermentec/CEBTEC/ESALQ/USP, Piracicaba, 144 p.

Zimmermann, M.; Fournier, P., 1996. Electrophoretic karyotyping of yeasts. In: Wolf, K. (Eds)., Non-conventional yeasts in biotechnology. Springer, pp. 101-116. https://doi.org/10.1007/978-3-642-79856-6_3.

Publicado

09-10-2024

Como Citar

Muynarsk, E. de S. M., Christofoleti-Furlan, R. M., Colonia, B. S. O., Belini Junior, E., Silva, D. G. H. da, & Basso, L. C. (2024). Yeast enhancement by mass mating and selective pressure for the integrated production process of first and second-generation ethanol. Revista Brasileira De Ciências Ambientais, 59, e2141. https://doi.org/10.5327/Z2176-94782141

Edição

Seção

Seção Especial: Bioprocessos e Sustentabilidade